Ácido desoxirribonucleico
O ácido desoxirribonucleico (ADN, em português: ácido desoxirribonucleico[nota 1]; ou DNA, em inglês: deoxyribonucleic acid) é um polímero composto por duas cadeias polinucleotídicas que se enrolam umas sobre as outras para formar uma dupla hélice. O polímero carrega instruções genéticas para o desenvolvimento, funcionamento, crescimento e reprodução de todos os organismos conhecidos e muitos vírus. O ADN e o ácido ribonucléico (RNA) são ácidos nucleicos. Ao lado de proteínas, lipídios e carboidratos complexos (polissacarídeos), os ácidos nucléicos são um dos quatro principais tipos de macromoléculas essenciais para todas as formas de vida conhecidas.
É um composto orgânico cujas moléculas contêm as instruções genéticas que coordenam o desenvolvimento e funcionamento de todos os seres vivos e alguns vírus, e que transmitem as características hereditárias de cada ser vivo. A sua principal função é armazenar as informações necessárias para a construção das proteínas de ARNs. Os segmentos de ADN que contêm a informação genética são denominados genes. O restante da sequência de ADN tem importância estrutural ou está envolvido na regulação do uso da informação genética.
A estrutura da molécula de ADN foi originalmente descoberta por Rosalind Franklin. No entanto, o Prémio Nobel de Fisiologia ou Medicina de 1962 foi entregue ao norte-americano James Watson e ao britânico Francis Crick, que se inspiraram em Franklin e demonstraram o funcionamento e a estrutura em dupla hélice do ADN em 7 de Março de 1953, juntamente com Maurice Wilkins.
Do ponto de vista químico, o ADN é um longo polímero de unidades simples (monômeros) de nucleotídeos, cuja cadeia principal é formada por moléculas de açúcares e fosfato intercalados unidos por ligações fosfodiéster. Ligada à molécula de açúcar está uma de quatro bases nitrogenadas mantidas juntas por forças hidrofóbicas.[2] A sequência de bases ao longo da molécula de ADN constitui a informação genética. A leitura destas sequências é feita por intermédio do código genético, que especifica a sequência linear dos aminoácidos das proteínas. A tradução é feita por um ARN mensageiro que copia parte da cadeia de ADN por um processo chamado transcrição e posteriormente a informação contida neste é "traduzida" em proteínas pela tradução. Embora a maioria do ARN produzido seja usado na síntese de proteínas, algum ARN tem função estrutural, como por exemplo o ARN ribossômico, que faz parte da constituição dos ribossomos.
Dentro da célula, o ADN pode ser observado numa estrutura chamada cromossoma durante a metáfase. O conjunto de cromossomas de uma célula forma o cariótipo. Antes da divisão celular os cromossomas são duplicados por meio de um processo chamado replicação. Eucariontes como animais, plantas, fungos e protozoários têm o seu ADN dentro do núcleo enquanto procariontes como as bactérias o têm disperso no citoplasma. Dentro dos cromossomas, proteínas da cromatina como as histonas compactam e organizam o ADN. Estas estruturas compactas guiam as interacções entre o ADN e outras proteínas, ajudando a controlar que partes do ADN são transcritas.
Propriedades físicas e químicas
O ADN é um longo polímero formado por unidades repetidas chamadas nucleotídeos.[3][4] A cadeia de ADN tem 2,2 a 2,4 nanómetros de largura, e um nucleotídeo possui aproximadamente 0,33 nanómetros de comprimento.[5] Embora os monômeros (nucleotídeos) que constituem o ADN sejam muito pequenos, os polímeros de ADN podem ser moléculas enormes, com milhões de nucleotídeos. Por exemplo, o maior cromossomo humano (cromossomo 1), possui 220 milhões de pares de bases de comprimento.[6] Uma molécula de ADN do ser humano possui aproximadamente dois metros de comprimento, encapsulada em um núcleo celular de 6 µm, o equivalente a acomodar uma linha de 40 km de comprimento em uma bola de tênis.[3]
Em organismos vivos, o ADN não existe como uma molécula única (cadeia simples), mas sim como um par de moléculas firmemente associadas.[7][8] As duas longas cadeias de ADN enrolam-se como uma trepadeira formando uma dupla hélice. Os nucleotídeos estão presentes em ambas as cadeias da dupla hélice, unidos com nucleótidos da mesma cadeia por ligações fosfodiéster e à cadeia complementar por meio de pontes de hidrogénio formadas pelas suas bases. Em geral, uma base ligada a um açúcar é chamada nucleosídeo e uma base ligada a um açúcar e um ou mais fosfatos é chamada nucleotídeo. Portanto, o ADN pode ser referido como um polinucleotídeo.[9]
A cadeia principal do ADN é formada por fosfato e resíduos de açúcar, dispostos alternadamente. O açúcar no ADN é 2-desoxirribose, uma pentose (açúcar com cinco carbonos). Os açúcares são unidos por grupos fosfato que formam ligações fosfodiester entre o terceiro e quinto átomos de carbono dos anéis de açúcar adjacentes. Estas ligações assimétricas significam que uma cadeia de ADN tem uma direção. Numa dupla hélice, a direção dos nucleotídeos de uma cadeia é oposta à direção dos nucleotídeos da outra cadeia. O formato das cadeia do ADN é designado antiparalelo. As terminações assimétricas das cadeias de ADN são designadas terminais 5' (cinco linha) e 3' (três linha). Uma das diferenças principais entre o ADN e o ARN encontra-se no açúcar, com a substituição da 2-desoxirribose no ADN pela ribose no ARN.[3]
A dupla hélice do ADN é estabilizada por pontes de hidrogênio entre as bases presas às duas cadeias. As quatro bases encontradas no ADN são a adenina (A), citosina (C), guanina (G) e timina (T). Estas quatro bases ligam-se ao açúcar/fosfato para formar o nucleotídeo completo.[3]
Estas bases são classificadas em dois tipos; a adenina e guanina são compostos heterocíclicos chamados purinas, enquanto a citosina e timina são pirimidinas. Uma quinta base (uma pirimidina) chamada uracila (U) aparece no ARN e substitui a timina, a uracila difere da timina pela falta de um grupo de metila no seu anel. A uracila normalmente não está presente no ADN, só ocorrendo como um produto da decomposição da citosina.[3] Exceções para esta regra são os fagos AR9, 3NT, I10, bem como o PBS1 (muito utilizado em pesquisas), que contém uracila no seu ADN, em vez de timina.[10]
Emparelhamento de bases
Cada tipo de base numa cadeia forma uma ligação com apenas um tipo de base na outra cadeia. Este comportamento é designado de complementariedade de bases. Assim, as purinas formam pontes de hidrogênio com pirimidinas, i.e. A liga-se com T e C com G. Este arranjo de dois nucleotídeos complementares na dupla hélice é chamado par de bases. Além das pontes de hidrogênio entre as bases, as duas cadeias são mantidas juntas devido a forças geradas por interações hidrofóbicas entre as bases empilhadas, a qual não é influenciada pela sequência do ADN.[11] Como as pontes de hidrogênio não são ligações covalentes, podem ser quebradas e reunidas com relativa facilidade. Desta forma, as duas fitas da dupla hélice de ADN podem ser separadas como um zíper (fecho de correr) por força mecânica ou altas temperaturas.[12] Como resultado desta complementariedade, toda a informação contida numa das cadeias de ADN está também contida na outra, o que é fundamental para a replicação do ADN.[3]
Os dois tipos de pares de base formam diferentes números de pontes de hidrogênio: AT forma duas pontes de hidrogênio enquanto GC formam três pontes de hidrogênio. Desta forma a interação entre GC é mais forte que AT. Como resultado, a percentagem de GC numa dupla fita de ADN determina a força de interação entre as duas cadeias.[13] Uma parte da dupla cadeia de ADN que precisa de ser separada facilmente, tal como a TATAAT Caixa de Pribnow nos promotores bacterianos, tende a ter sequências com maior predomínio de AT, para facilitar a abertura da dupla cadeia aquando da transcrição. No laboratório, a força desta interacção pode ser medida encontrando a temperatura necessária para quebrar as pontes de hidrogénio, a temperatura de desnaturação (também chamado Tm). Quando todos os pares de base numa dupla hélice de ADN quebram as suas ligações, as duas cadeias separam-se e existem em solução como duas moléculas completamente independentes. Estas moléculas de ADN de cadeia simples não têm uma única forma comum, mas algumas conformações são mais estáveis do que outras.[14]
Sulcos
O ADN normalmente encontra-se em forma de uma espiral dextrógira (gira para a direita, ou no sentido horário). Portanto, as duas cadeias de nucleotídeos giram uma sobre a outra e acabam por formar sulcos entre as cadeias de fosfato, deixando expostas as faces das bases nitrogenadas que não estão unidas por pontes de hidrogênio com a base complementar.[15]
Há dois tipos de sulcos na superfície da dupla hélice: um com 22 Å denominado sulco maior e um com 12 Å designado de sulco menor.[16]
A principal função dos sulcos do ADN é fornecer a informação acerca das bases que se encontram ligadas numa determinada região da dupla cadeia sem necessidade de abertura. O sulco maior oferece maior acessibilidade para ligação com proteínas do que o sulco menor. Um exemplo disto é a TBP (TATA-binding protein) uma importante proteína para a transcrição em eucariotas.[17]
Senso e antissenso
Uma sequência de ADN é chamada de senso se possui a mesma sequência do ARNm. A cadeia oposta (complementar) à cadeia "senso" é denominada sequência antissenso. Como a ARN polimerase sintetiza um ARN que é complementar à fita molde, então podemos dizer que ela utiliza a cadeia anti-senso como molde para produzir um ARN. As sequências senso e anti-senso podem existir em diferentes partes da mesma cadeia de ADN, que pode ser de um lado ou do outro, dependendo de onde se encontra a sequência codificadora.
Às vezes não é possível dizer qual é a cadeia senso ou antissenso. Isto acontece devido à existência de genes que se sobrepõem. Neste caso ambas as cadeias dão origem a um ARN.[18] Nas bactérias, a sobreposição pode estar envolvida da regulação da transcrição.[19]
Nos vírus, a sobreposição aumenta a capacidade do armazenamento de informações em pequenos genomas virais.[20]
Superenrolamento
O ADN pode ser torcido num processo denominado superenrolamento. No estado relaxado do ADN, uma fita normalmente dá uma volta completa ao eixo da dupla hélice a cada 10,4 pares de base, mas se o ADN está torcido, as cadeias ficam mais ou menos enroladas.[21]
Se o ADN está torcido na direção da hélice, é denominado um superenrolamento positivo e as bases estão unidas mais firmemente. Já o superenrolamento negativo refere-se a uma torção na direção oposta, resultando num afrouxamento das bases. Na natureza, o ADN apresenta um ligeiro superenrolamento negativo que é causado pela ação da enzima topoisomerase.[22]
Estas enzimas também são necessárias para aliviar o estresse de torção causado no ADN durante os processos de transcrição e replicação.[23]
Estrutura alternativa da dupla hélice
O ADN pode existir em muitas formações diferentes. As formações mais comuns são: ADN-A, ADN-B, ADN-C, ADN-D,[24] ADN-E,[25] ADN-H,[26] ADN-L,[24] ADN-P,[27] e ADN-Z.[28]
Porém, só as formações de ADN A, B e Z foram encontradas em sistemas biológicos naturais. A formação que o ADN adopta depende de vários fatores da própria sequência de ADN: a intensidade e direção do superenrolamento, modificações químicas das bases e a solução na qual o ADN está presente (ex.: concentração de metais, iões e poliaminas).[29]
Das três formações referidas, a forma “B” é a mais comum nas condições encontradas nas células.[30]
A forma “A” corresponde à espiral dextra mais larga, com um sulco menor largo e superficial e um sulco maior estreito e profundo. A forma “A” ocorre sob condições não fisiológicas em amostras de ADN desidratadas, enquanto na célula pode ser produzida por pareamento híbrido de ADN e ARN ou pelo complexo enzima-ADN.[31][32]
Em segmentos de ADN onde as bases foram quimicamente modificadas por metilação, o ADN pode sofrer uma grande modificação na sua formação e adoptar a forma ADN-Z. A cadeia gira sobre o eixo da dupla hélice para a esquerda, o oposto da forma mais comum – ADN-B.[33]
Esta estrutura é rara e pode ser reconhecida por proteínas especificas de ligação com o ADN-Z. Pode estar envolvida na regulação da transcrição.[34]
Estruturas em quadrúplex
Nas extremidades do cromossomas lineares estão zonas especializadas do ADN chamadas telómeros. A função principal destas regiões é permitir que a célula replique as extremidades do cromossoma usando a enzima telomerase, porque enzimas que permitem replicar ADN normalmente não conseguem copiar as extremidades 3' dos cromossomas.[36] Estas tampas de cromossoma especializadas também ajudam a proteger as extremidades do ADN, e evitam que o sistema de reparação de ADN elimine estas regiões como erros que precisassem de ser corrigidos.[37] Em células humanas, os telómeros têm normalmente vários milhares de repetições de uma sequência simples (TTAGGG).[38]
Estas sequências ricas em guanina podem estabilizar as extremidades dos cromossomas formando estruturas de unidades de quatro bases empilhadas, ao invés dos pares de base usuais encontrados em outras moléculas de ADN. Quatro bases de guanina formam uma placa chata e depois estas unidades chatas de quatro bases empilham-se no topo umas das outras, para formarem estruturas quadrúplex-G estáveis.[39] Estas estruturas são estabilizadas por pontes de hidrogénio entre as margens das bases e por quelação de um ião metálico no centro de cada unidade de quatro bases.[40] Outras estruturas podem também ser formadas, com o conjunto central de quatro bases provenientes de uma cadeia simples enrolada à volta das bases ou de diversas cadeias paralelas, cada uma contribuindo com uma base para a estrutura central.[41]
Além destas estruturas empilhadas, os telómeros também formam grandes estruturas em forma de laço chamados telomere loops ou T-loops. O ADN de cadeia simples enrola-se à volta de um círculo grande estabilizado por proteínas que se ligam a telómeros.[42] Mesmo no fim dos T-loops, o ADN de cadeia simples do telómero é mantido sobre uma região de ADN de cadeia dupla pela cadeia do telómero que desestabiliza o ADN de dupla hélice e o emparelhamento de bases de uma das duas cadeias. Esta estrutura de cadeia tripla é chamada de laço de deslocamento ou D-loop.[39]
Modificações químicas
Modificações de bases
A expressão de genes é influenciado pela maneira como o ADN está disposto nos cromossomas, numa estrutura chamada cromatina. As modificações de bases podem estar envolvidas na disposição, com as regiões quem tem expressão génica baixa ou inexistente contendo usualmente níveis elevados de metilação de citosina. Por exemplo, a metilação de citosina produz 5-metilcitosina, que é importante na inactivação do cromossoma X.[43] O nível médio de metilação varia entre organismos - o verme Caenorhabditis elegans tem pouca metilação da citosina, enquanto vertebrados têm níveis mais elevados, com até 1% do seu ADN contendo 5-metilcitosina[44] Apesar da importância da 5-metilcitosina, esta pode desaminar transformando-se em timina. Citosinas metiladas são por isso especialmente susceptíveis de sofrer mutações.[45] Outras modificações de bases incluem metilação de adeninas em bactérias e glicosilação do uracilo para produzir a "base-J" em organismos da classe Kinetoplastida.[46][47]
Danos ao ADN
O ADN pode ser danificado por muitos tipos diferentes de mutagénios, que alteram a sequência de ADN. Estes incluem agentes oxidantes, agentes alquilantes e também por radiação electromagnética de grande energia tal como luz ultravioleta e raios-X. O tipo de dano ao ADN produzido depende do tipo de mutagénio. A luz ultravioleta, por exemplo, pode danificar o ADN produzindo dímeros de timina, que são ligações cruzadas entre pirimidinas.[49] Por outro lado, oxidantes como radicais livres ou peróxido de hidrogénio produzem múltiplos tipos de danos, incluindo modificações de bases, em particular guanosina, e quebras das cadeias duplas.[50] Em cada célula humana, cerca de 500 bases podem sofrer danos por oxidação por dia.[51][52] As quebras da cadeia dupla são lesões oxidativas de difícil reparação, que podem produzir mutações pontuais, inserções e delecções, assim como translocações cromossómicas.[53]
Muitos mutagénios encaixam entre o espaço entre dois pares de bases adjacentes, na chamada intercalação. A maioria dos intercaladores são aromáticos e moléculas planas e incluem brometo de etídio, daunomicina, doxorrubicina e talidomida. Para que um intercalador encaixe entre pares de bases, as bases têm de se separar, abrindo a cadeia dupla. Isto inibe a transcrição e a replicação do ADN, causando toxicidade e mutações. Como resultado, os intercaladores de ADN são muitas vezes carcinogénicos. Benzopireno, acridinas, aflatoxina e brometo de etídio são exemplos bem conhecidos.[54][55][56] No entanto, devido à sua capacidade de inibir a transcrição e replicação, estas toxinas também são usadas em quimioterapia para inibir o crescimento rápido de células tumorais.[57]
Funções biológicas
O ADN ocorre normalmente como cromossomas lineares em eucariotas e como cromossomas circulares em procariotas. O conjunto dos cromossomas numa célula perfazem o seu genoma; o genoma humano tem aproximadamente 3 mil milhões de pares de base dispostos em 46 cromossomas.[58] A informação transportada pelo ADN está contida nas sequências de ADN chamados genes. A transmissão da informação dos genes é conseguida pela complementaridade do emparelhamento das bases. Por exemplo, na transcrição, quando uma célula usa a informação num gene, a sequência de ADN é copiado para uma sequência de ARN complementar por meio da atracção entre o ADN e os nucleotídeos de ARN correctos. Esta cópia de ARN pode ser depois usada para compor uma sequência proteica correspondente no processo de tradução, que depende da mesma interacção entre nucleotídeos de ARN. Alternativamente, uma célula pode simplesmente copiar a sua informação genética num processo chamado replicação do ADN.
Genes e genomas
O ADN genómico está localizado no núcleo celular dos eucariontes, assim como em pequenas quantidades em mitocôndrias e em cloroplastos. Em procariontes, o ADN está dentro de um corpo de forma irregular no citoplasma chamado nucleóide.[60] A informação genética num genoma está nos genes, e o conjunto completo desta informação num organismo é chamado o seu genótipo. Um gene é a unidade básica da hereditariedade e é uma região do ADN que influencia uma característica particular num organismo. Genes contêm uma fase aberta de leitura que pode ser transcrita, assim como sequências reguladoras tais como promotores ou acentuassomos, que controlam a transcrição da fase aberta de leitura.
Em muitas espécies, apenas uma pequena fracção da sequência total do genoma codifica uma proteína. Por exemplo, apenas 1,5% do genoma humano consiste de exões (que codificam proteínas), com mais de 50% do ADN humano consistindo de sequências repetitivas.[61] As razões para a presença de tanto ADN não codificante em genomas eucarióticos e as extraordinárias diferenças no tamanho do genoma, ou valor C, entre espécies representam um enigma conhecido por enigma do valor C.[62] Contudo, sequências de ADN que não codificam proteínas podem ainda codificar moléculas de ARN não codificante funcional, que estão envolvidas na regulação da expressão génica.[63]
Algumas sequências de ADN não codificante têm um papel estrutural nos cromossomas. Os telómeros e centrómeros contêm tipicamente poucos genes, mas são importantes para a função e estabilidade dos cromossomas.[37][64] Uma forma abundante de ADN não codificante em humanos são os pseudogenes, que são cópias de genes que foram desabilitados por mutação.[65] Estas sequências são usualmente apenas fósseis moleculares, apesar de poderem servir ocasionalmente como material genético em bruto para a criação de novos genes por meio do processo de duplicação de genes e divergência.[66]
Transcrição e tradução
Um gene é uma sequência de ADN que contêm informação genética e pode influenciar o fenótipo de um organismo. Dentro de um gene, a sequência de bases ao longo de uma cadeia de ADN definem uma cadeia de ARN mensageiro, que por sua vez define uma ou mais sequências proteicas. A relação entre a sequência de nucleótidos de um gene e a sequência de aminoácidos de uma proteína é determinada pelas regras de tradução, conhecidas colectivamente como o código genético. O código genético consiste de 'palavras' de três letras chamadas codões formadas por uma sequência de três nucleótidos (p.e. ACU, CAG, UUU).[67]
Na transcrição, os codões de um gene são copiados para um ARN mensageiro pela ARN polimerase. Esta cópia de ARN é depois descodificada por um ribossoma que lê a sequência de ARN emparelhando o ARN mensageiro com o ARN de transferência, que carrega aminoácidos. Uma vez que há quatro bases em combinações de 3 letras, há 64 codões possíveis ( combinações). Estas codificam os vinte aminoácidos, dando à maioria dos aminoácidos mais do que um codão possível. Há também três codões 'stop' ou 'nonsense' significando o fim da região codificante; estes são os codões UAA, UGA e UAG.[68]
Replicação
A divisão celular é essencial para que um organismo cresça, mas quando uma célula se divide tem de replicar o ADN do seu genoma para que as duas células-filha tenham a mesma informação genética que a célula parental. A estrutura em dupla-hélice do ADN fornece um mecanismo simples para a sua replicação. As duas cadeias são separadas e sequências de ADN complementares a cada uma das cadeias são recriadas por uma enzima chamada ADN polimerase. Esta enzima constrói a cadeia complementar encontrando a base correcta por intermédio do emparelhamento com a base complementar, e ligando-a à cadeia original. Como as polimerases de ADN só conseguem fazer a extensão de uma cadeia de ADN na direcção 5' para 3', outros mecanismos são usados para copiar a cadeia antiparalela da dupla hélice.[69] Desta forma, a base presente na cadeia antiga determina que base vai aparecer na nova cadeia e a célula acaba com uma cópia perfeita do seu ADN.
Interacções com proteínas
Todas as funções do ADN dependem de interacções com proteínas. Estas interacções com proteínas podem ser não específicas, ou a proteína pode ligar-se especificamente a uma única sequência de ADN. Algumas enzimas também se podem ligar ao ADN. Destas, as polimerases que copiam as sequências de ADN na transcrição e replicação são particularmente importantes.
Proteínas que se ligam ao ADN (DNA-binding)
Proteínas estruturais que se ligam ao ADN são exemplos bem estudados de interacções não específicas ADN-proteínas. Nos cromossomas, o ADN está ligado a proteínas estruturais formando complexos. Estas proteínas organizam o ADN numa estrutura compacta, a cromatina. Em eucariontes esta estrutura envolve a ligação do ADN a um complexo de pequenas proteínas básicas chamadas histonas, enquanto em procariontes estão envolvidas vários tipos de proteínas.[70][71] As histonas formam um complexo em forma de disco, o nucleossoma, que contém duas voltas completas de ADN de cadeia dupla à sua volta. Estas interacções não específicas formam-se quando os resíduos básicos das histonas fazem ligações iónicas ao esqueleto açúcar-fosfato acídico do ADN, e por isso são largamente independentes da sequência de bases.[72] Modificações químicas nestes resíduos de amino-ácidos incluem metilação, fosforilação e acetilação.[73] Estas mudanças químicas alteram a força da interacção entre o ADN e as histonas, tornando o ADN mais ou menos acessível a factores de transcrição e mudando a taxa de transcrição.[74] Outras proteínas com ligação a ADN não específicas incluem o grupo de proteínas de alta mobilidade, que se ligam a ADN dobrado ou distorcido.[75] Estas proteínas são importantes pois dobram conjuntos de nucleossomas e organizam-nos em estruturas maiores que constituem os cromossomas.[76]
Um grupo distinto destas proteínas são as que se ligam especificamente a ADN de cadeia simples. Nos humanos, a proteína de replicação A é o membro desta família mais bem compreendido e é usado em processos onde a dupla hélice é separada, incluindo durante a replicação do ADN, recombinação e reparo.[77] Estas proteínas parecem estabilizar ADN de cadeia dupla e protegem-no da formação de hairpin loops e da degradação por nucleases.
Em contraste, outras proteínas evoluíram de modo a ligar-se a sequências de ADN específicas. Os factores de transcrição são dos mais intensivamente estudados (proteínas que regulam a transcrição). Cada factor de transcrição liga-se a um conjunto particular de sequências de ADN e activa ou inibe a transcrição de genes que tenham estas sequências perto dos seus promotores. Os factores de transcrição fazem isto de duas maneiras. Primeiro, podem ligar-se à polimerase do ARN responsável pela transcrição, quer directamente quer por meio de proteínas mediadoras; isto posiciona a polimerase no promotor e permite que comece a transcrição.[79] Em alternativa, os factores de transcrição podem ligar-se a enzimas que modificam as histonas no promotor; isto muda a acessibilidade do molde de ADN à polimerase.[80]
Como estes locais de ligação podem ocorrer pelo genoma inteiro de um organismo, mudanças na actividade de um tipo de factor de transcrição pode afectar milhares de genes.[81] Por consequência, estas proteínas são muitas vezes alvo de processos de transdução de sinal que controlam respostas a mudanças ambientais ou diferenciação e desenvolvimento celular. A especificidade da interacção destes factores de transcrição com o ADN provém das proteínas que fazem contactos múltiplos com a extremidade das bases de ADN, permitindo a leitura da sequência de ADN. A maior parte destas interacções com bases faz-se no sulco maior, onde as bases estão mais acessíveis.[82]
Enzimas que modificam o ADN
Nucleases e ligases
As nucleases são enzimas que cortam as cadeias de ADN mediante a catálise da hidrólise das ligações fosfodiéster. As nucleases que hidrolisam nucleótidos a partir dos extremos das cadeias de ADN denominam-se exonucleases, enquanto as endonucleases cortam no interior das cadeias. As nucleases que se utilizam com maior frequência em biologia molecular são as enzimas de restrição, endonucleases que cortam o ADN em sequências específicas. Por exemplo, a enzima EcoRV, mostrada à esquerda, reconhece a sequência de 6 bases 5′-GAT|ATC-3′ e faz um corte em ambas as cadeias na linha vertical indicada, gerando duas moléculas de ADN. Outras enzimas de restrição geram, no entanto, extremidades coesivas, já que cortam de forma diferente as duas cadeias de ADN. Na natureza, estas enzimas protegem as bactérias contra as infecções de fagos, ao digerir o ADN do fago quando entra através da parede bacteriana, actuando como um mecanismo de defesa.[84] Em biotecnologia, estas nucleases específicas utilizam-se na clonagem molecular e na técnica de impressão de ADN ( fingerprinting, em inglês).
As enzimas denominadas ADN ligases podem reunir pedaços de ADN cortados ou quebrados.[85] As ligases são particularmente importantes na replicação do ADN da cadeia atrasada de ADN, já que unem os fragmentos curtos de ADN gerados no garfo de replicação para formar uma cópia completa do molde de ADN. Também se utilizam no reparo de ADN e na recombinação genética.[85]
Topoisomerases e helicases
As topoisomerases são enzimas que possuem actividade de nuclease e ligase. Estas proteínas mudam a quantidade de ADN superenrolado. Algumas destas enzimas funcionam cortando a hélice de ADN e permitindo a uma secção que faça rotação, de maneira a reduzir o grau de superenrolamento; uma vez feito isto, a enzima volta a unir os fragmentos de ADN.[22] Outros tipos de enzimas são capazes de cortar uma hélice de ADN e depois passar a segunda cadeia de ADN através desta quebra, antes de reunir as hélices.[86] As topoisomerases são necessárias para muitos processos em que intervém o ADN, como a replicação e a transcrição.[23]
As helicases são proteínas que pertencem ao grupo dos motores moleculares. Utilizam energia química armazenada nos trifosfatos de nucleósidos, fundamentalmente ATP, para romper pontes de hidrogénio entre bases e separar a dupla hélice de ADN em cadeias simples. Estas enzimas são essenciais para a maioria dos processos em que as enzimas necessitam de aceder às bases do ADN.[87]
Polimerases
As polimerases são enzimas que sintetizam cadeias de nucleótidos a partir de trifosfatos de nucleósidos. A sequência de seus produtos são cópias de cadeias de polinucleótidos existentes, que se denominam moldes. Estas enzimas funcionam adicionando nucleótidos ao grupo hidróxilo em 3' do nucleótido anterior numa cadeia de ADN. Por consequência, todas as polimerases funcionam na direcção 5′ → 3′.[88] Nos sítios activos destas enzimas, o trifosfato de nucleósido que se incorpora emparelha a sua base com a correspondente no molde: isto permite que a polimerase sintetize de forma precisa a cadeia complementar ao molde.
As polimerases classificam-se de acordo com o tipo de molde que utilizam:
- Na replicação do ADN, uma ADN polimerase dependente de ADN realiza uma cópia de ADN a partir de uma sequência de ADN. A precisão é vital neste processo, por isso muitas destas polimerases possuem uma actividade de verificação de leitura (proofreading). Mediante esta actividade, a polimerase reconhece erros ocasionais na reacção de síntese, devido à falta de emparelhamento entre o nucleótido erróneo e o molde, o que gera um desacoplamento (mismatch). Se se detecta um desacoplamento, activa-se uma actividade exonuclease na direcção 3′ → 5′ e a base incorrecta é eliminada.[89] Na maioria dos organismos, as ADN polimerases funcionam num grande complexo denominado replissoma, que contém múltiplas unidades acessórias, como helicases.[90]
- As ADN polimerases dependentes de ARN são uma classe especializada de polimerases que copiam a sequência de uma cadeia de ARN em ADN. Incluem a transcriptase reversa, que é uma enzima viral implicada na infecção de células por retrovírus, e a telomerase, que é necessária para a replicação dos telómeros.[36][91] A telomerase é uma polimerase inusual, porque contém o seu próprio molde de ARN como parte da sua estrutura.[37]
- A transcrição é levada a cabo por uma ARN polimerase dependente de ADN que copia a sequência de uma das cadeias de ADN em ARN. Para começar a transcrever um gene, a ARN polimerase une-se a uma sequência do ADN denominada promotor, e separa as cadeias de ADN. Então copia a sequência do gene num transcrito de ARN mensageiro até que alcança uma região do ADN denominada terminador, onde se detém e se separa do ADN. Como ocorre com as ADN polimerases dependentes de ADN em humanos, a ARN polimerase II (a enzima que transcreve a maioria dos genes do genoma humano) funciona como um grande complexo multiproteíco que contém múltiplas subunidades reguladoras e acessórias.[92]
Recombinação genética
Uma hélice de ADN normalmente não interage com outros segmentos de ADN. Nas células humanas os diferentes cromossomas ocupam áreas separadas no núcleo celular denominadas “territórios cromossómicos”.[94] A separação física dos diferentes cromossomas é importante para que o ADN mantenha a sua capacidade de funcionar como um armazém estável de informação. Um dos poucos momentos em que os cromossomas interagem é durante o sobrecruzamento cromossómico (chromosomal crossover, em inglês), durante o qual se recombinam. O sobrecruzamento cromossómico ocorre quando duas hélices de ADN se rompem, sofrem intercâmbio e se unem novamente.[95]
A recombinação permite aos cromossomas trocar informação genética e produzir novas combinações de genes, o que aumenta a eficiência da selecção natural e pode ser importante na evolução rápida de novas proteínas.[96] Durante a profase I da meiose, uma vez que os cromossomas homólogos estão perfeitamente emparelhados formando estruturas que se denominam bivalentes, produz-se o fenómeno de sobrecruzamento ou entrecruzamento (crossing-over), no qual os cromatídeos homólogos não irmãos (procedentes do pai e da mãe) trocam material genético. A recombinação genética resultante faz aumentar em grande medida a variação genética entre a descendência de progenitores que se reproduzem por via sexual. A recombinação genética também pode estar implicada na reparação do ADN, em particular na resposta celular às roturas da dupla cadeia (double-strand breaks).[97]
A forma mais frequente de sobrecruzamento cromossómico é a recombinação homóloga, na qual os dois cromossomas implicados compartilham sequências muito similares. A recombinação não homóloga pode ser danosa para as células, já que pode produzir translocações cromossómicas e anormalidades genéticas. A reacção de recombinação é catalisada por enzimas conhecidas como recombinases, tais como a RAD51.[98] O primeiro passo no processo de recombinação é uma rotura da dupla cadeia, causada por uma endonuclease ou por dano no ADN.[99] Posteriormente, uma série de passos catalisados em parte pela recombinase conduz à união das duas hélices formando pelo menos uma junção de Holliday, na qual um segmento de uma cadeia simples é anelada com a cadeia complementar na outra hélice. A junção de Holliday é uma estrutura de união tetraédrica que pode mover-se ao longo do par de cromossomas, intercambiando uma cadeia por outra. A reacção de recombinação detém-se pelo corte da união e a reunião dos segmentos de ADN libertados.[100]
Evolução do metabolismo de ADN
O ADN contém a informação genética que permite à maioria dos organismos vivos funcionar, crescer e reproduzir-se. No entanto, desconhece-se o intervalo de tempo durante o qual ele exerceu esta função nos ~3000 milhões de anos desde a história da vida, já que se propôs que as formas de vida mais precoces poderiam ter utilizado ARN como material genético.[101][102] O ARN poderia ter funcionado como parte central de um metabolismo primordial, já que pode transmitir informação genética e simultaneamente actuar como catalisador, formando parte das ribozimas.[103] Este antigo mundo de ARN onde os ácidos nucleicos funcionariam como catalisadores e como armazéns de informação genética, poderia ter influenciado na evolução do código genético actual, baseado em quatro nucleótidos. Isto se deveria a que o número de bases únicas num organismo é determinado entre um número pequeno de bases (o que aumentaria a precisão da replicação) e um número grande de bases (que por sua vez aumentaria a eficiência catalítica das ribozimas).[104]
Infelizmente, não dispomos de evidência directa dos sistemas genéticos ancestrais, porque a recuperação do ADN a partir da maior parte dos fósseis é impossível. O ADN é capaz de sobreviver no meio ambiente durante menos de um milhão de anos, e logo começa a degradar-se lentamente em fragmentos de menor tamanho em solução.[105] Algumas investigações pretendem a obtenção de ADN mais antigo, como no caso do isolamento de uma bactéria viável a partir de um cristal salino de 250 milhões de anos de antiguidade,[106] mas estes dados são controversos.[107][108]
No entanto, podem utilizar-se ferramentas de evolução molecular para inferir os genomas de organismos ancestrais a partir de organismos contemporâneos.[109][110] Em muitos casos, estas inferências são suficientemente fiáveis, de maneira que uma biomolécula codificada num genoma ancestral pode ser ressuscitada no laboratório para ser estudada hoje.[111][112] Uma vez recomposta a biomolécula ancestral, suas propriedades poderiam oferecer informações sobre os ambientes primordial, remetendo ao campo emergente da paleogenética experimental.[113] Apesar de tudo, o processo de trabalho retrospectivo tem limitações inerentes, razão pela qual outros investigadores tentam elucidar o mecanismo evolutivo trabalhando desde a origem da Terra até adiante no tempo. Dada suficiente informação sobre como as substâncias cósmicas poderiam haver-se depositado na Terra e sobre as transformações que poderiam ter tido lugar na superfície terrestre, talvez poderíamos ser capazes de desenvolver modelos prospectivos de evolução da informação genética.
História
Descoberta
A história do ADN começa no final da década de 1860, com a chegada do bioquímico e médico suíço Friedrich Miescher (1844-1895) à Universidade de Tübingen, uma pacata cidade no sul da Alemanha. O jovem pesquisador estava disposto à dedicar-se ao estudo da química da célula e escolheu essa universidade porque nela o químico Felix Hoppe-Seyler (1825-1895) havia inaugurado um importante laboratório de química fisiológica. Na época floresciam ideias a respeito das origens e funções das células, após a queda da teoria da geração espontânea. A teoria celular estabelecia-se como um dos pilares da Biologia. Por tudo isso, as células atraíam a atenção de estudantes entusiasmados, como Miescher.[114]
Felix Hoppe-Seyler foi quem primeiro descreveu as interações entre a hemoglobina, a proteína responsável pela cor do sangue, e o gás oxigênio. Seu trabalho levou-o a interessar-se pela composição bioquímica dos linfócitos. Mas Miescher enfrentou dificuldades para obter amostras com linfócitos em quantidade e grau de pureza adequados. Por sugestão de Hoppe-Seyler, Miescher começou a estudar a química das células do pus; o material para a pesquisa era abundante, pois dezenas de bandagens com material purulento eram diariamente descartadas por um hospital próximo à universidade. Miescher desenvolveu técnicas adequadas para o isolamento das células presentes em pus das bandagens e para a sua análise química. O objetivo inicial era investigar as proteínas celulares, um grupo de substâncias descoberto cerca de trinta anos antes.[114]
Em um dos seus muitos experimentos com células do pus, Miescher obteve um precipitado que diferia quimicamente de todas as substâncias protéicas conhecidas. Ele descobriu que a nova substância concentrava-se no núcleo celular, na época considerado uma estrutura de pouca importância para o funcionamento celular. Aprimorando os métodos de extração e purificação da nova substância, Miescher pôde realizar uma análise química mais precisa, que mostrou que as quantidades relativas de hidrogênio, carbono, oxigênio e nitrogênio presentes diferiam das encontradas em proteínas, além de uma quantidade incomum de fósforo. À substância descoberta Miescher denominou nucleína, pelo fato de ela estar concentrada no núcleo das células.[114]
O trabalho sobre nucleína só foi publicado em 1871, após certa resistência do editor da revista científica, o próprio Hoppe-Seyler, que, no início, não acreditou nos resultados apresentados por Miescher. Mesmo depois da publicação do trabalho, muitos pesquisadores continuaram duvidando da existência da nucleína; na opinião deles, o achado de Miescher devia ser uma mistura de fosfato inorgânico e proteínas.[114][115]
Elucidação da composição química
As desconfianças quanto à real existência da nova substância descrita por Miescher só foram superadas por volta de 1889, quando Richard Altmann (1852-1900) obteve preparações altamente purificadas de nucleína, sem nenhuma contaminação por proteínas. Pelo fato de a substância ter caráter ácido, o que já havia sido detectado por Miescher, Altmann sugeriu que ela fosse chamada de ácido nucléico em vez de nucleína.[116]
Outro pesquisador pioneiro na descoberta foi Albrecht Kossel (1853-1927). Em 1877, ele juntou-se ao grupo de pesquisa de Hoppe-Seyler, então trabalhando na Universidade de Estrasburgo (França), e começou a estudar a composição química das nucleínas. Kossel detectou dois tipos de bases nitrogenadas já conhecidas, a adenina e a guanina. Em 1893, identificou uma nova base nitrogenada, que era liberada pela degradação de nucleína das células do timo; por isso denominou-a timina. Logo em seguida, descobriu que a nucleína continha um quarto tipo de base nitrogenada, a qual denominou citosina.[117] Em 1894, o grupo liderado por Kossel descobriu que os ácidos nucleicos continham também pentose, um açúcar com cinco átomos de carbono.[118] Em reconhecimento às suas contribuições na área, foi agraciado em 1910 com o Nobel de Fisiologia ou Medicina.[119]
Em 1909, Phoebus Levene e Walter Abraham Jacobs (1883-1967) conseguiram determinar a organização das moléculas de fosfato, de pentose e base nitrogenada no ácido nucleico.[120] Esses três componentes estão unidos entre si formando uma unidade fundamental, o nucleotídeo. Em 1929, Levene e colaboradores identificaram pentoses componente do ácido nucleico das células do timo, que denominaram 2-deoxi-D-ribose, pelo fato de ela possuir, no carbono 2 de sua cadeia, um átomo de oxigênio a menos que a ribose, uma pentose já conhecida, encontrada pelos pesquisadores em dois tipos de ácidos nucléicos: o ácido ribonucleico, ou ribose, e o ácido desoxirribonucléico, ou ADN, cujo açúcar é a desoxirribose.[121][122]
Descoberta da transformação
Frederick Griffith fez uma importante observação no curso dos experimentos com a bactéria Streptococcus pneumoniae em 1928. Esta bactéria, que causa pneumonia em humanos, normalmente é letal em camundongos. Entretanto algumas linhagens desta espécie de bactérias eram menos virulentas (menos capazes de causar doenças ou morte). Nos experimentos de Griffith, ele usou duas linhagens distinguíveis pelas suas colônias quando cultivadas em laboratório. Uma linhagem era um tipo normalmente virulento e mortal para a maioria dos animais de laboratório. As células desta linhagem estão envoltas em uma cápsula de polissacarídeo, dando às colônias em aspecto liso, sendo esta linhagem identificada com S (smooth, em inglês). A outra linhagem de Griffith era um tipo mutante não virulento que crescia em camundongos. Nesta linhagem, a capa de polissacarídeo está ausente, dando às colônias um aspecto rugoso. Esta linhagem é chamada R (rough, em inglês).[123]
Griffith inativou algumas células virulentas a alta temperatura. Injetou então as células mortas por aquecimento nos camundongos. Os camundongos sobreviveram, mostrando que os restos das células não causam morte. Entretanto os camundongos injetados com uma mistura de células virulentas mortas por aquecimento e células não virulentas vivas morreram. Além disso, as células vivas podiam ser recuperadas de camundongos mortos. Estas células deram colônias lisas e foram virulentas em uma injeção subsequente. De algum modo, os restos das células S aquecidas haviam convertido células R vivas em células S vivas.[124]
A etapa seguinte era determinar que componente químico das células doadoras mortas havia causado esta conversão. Esta substância tinha mudado o genótipo da linhagem receptora e portanto podia ser uma candidata a material genético. Este problema foi resolvido pelos experimentos feitos em 1944 por Oswald Avery e dois colegas, C M. Macleod e M. McCarty. Seu enfoque ao problema foi destruir quimicamente todas as principais categorias de substâncias no extrato de células mortas, uma de cada vez, e descobrir se o extrato havia perdido a habilidade de conversão. As células virulentas possuíam uma capa lisa de polissacarídeo, enquanto as células não virulentas, não. Assim os polissacarídeos eram um candidato óbvio a ser o agente responsável. Entretanto, quando os polissacarídeos foram destruídos, a mistura ainda era capaz de conversão. As proteínas, gorduras e ácido ribonucleico (ARN) foram todos excluídos. A mistura só perdia a sua capacidade de conversão quando a mistura doadora era tratada com enzima desoxirribonuclease (DNase), que quebra o ADN. Estes resultados indicavam fortemente que o ADN era o material genético. Hoje sabemos que os fragmentos do ADN transformante que conferem virulência entram no cromossomo bacteriano e substituem suas contrapartes que conferem não virulência.[125]
Experimento de Hershey-Chase
Os experimentos feitos por Avery e seus colegas foram definitivos, mas muitos cientistas mostraram-se muito relutantes em aceitar o ADN (e não as proteínas) como material genético.[116] Evidências adicionais foram publicadas em 1952 por Alfred Day Hershey e Martha Chase, cujo experimento com o fago T2, um vírus que transfecta na bactéria a informação específica para a reprodução viral. Se eles pudessem descobrir que material o fago transmitia à bactéria hospedeira, determinariam o material genético do fago.[126]
O fago tem uma constituição molecular relativamente simples. A maior parte de sua estrutura é de proteína, com o ADN contido dentro da capa de proteína de sua "cabeça". Hershey e Chase decidiram marcar o ADN e a proteína usando radioisótopos, de modo que pudessem rastrear os dois materiais durante a infecção. O fósforo não é encontrado nas proteínas mas é uma parte integrante do ADN. Contrariamente, o enxofre está presente nas proteínas mas nunca no ADN. Hershey e Chase incorporaram o radioisótopo de fósforo (32P) no ADN do fago e o enxofre (35S) nas proteínas de uma cultura separada de fagos. Eles então infectaram duas culturas de E. coli com muitas partículas de vírus por células: uma cultura de E. coli recebeu fagos marcados com 32P e a outra recebeu fagos marcados com 35S. Decorrido tempo suficiente para que ocorresse a infecção, os cientistas removeram as embalagens de fago (chamadas ghosts) das células bacterianas por agitação em um liquidificador. Eles separaram as células bacterianas dos envoltórios dos fagos em uma centrífuga e então mediram a radioatividade nas duas frações. Quando o fago marcado com 32P foi usado para infectar E. coli, a mais alta radioatividade foi encontrada dentro das bactérias, indicando que o ADN do fago havia entrado nas células. Quando era usado o fago marcado com 35S, maior parte do material radioativo estava nos invólucros dos fagos, indicando que a proteína do fago nunca entrava nas bactérias. A conclusão era inevitável: o ADN era o material hereditário. As proteínas do fago eram apenas embalagens estruturais abandonadas após o ADN viral entrar na bactéria.[126]
Aplicações
Engenharia genética
A investigação sobre o ADN tem um impacto significativo, especialmente no âmbito da medicina, mas também na agricultura e pecuária, com objectivos de domesticação, selecção e de cruzamentos dirigidos. A moderna biologia e bioquímica fazem uso intensivo da tecnologia do ADN recombinante, introduzindo genes de interesse em organismos, com o objectivo de expressar uma proteína recombinante concreta, que pode ser:
- isolada para seu uso posterior: por exemplo, podem-se transformar microorganismos para produzir grandes quantidades de substâncias úteis, como a insulina, que posteriormente se isolam e se utilizam em terapias;[127][128][129]
- necessária para substituir a expressão de um gene endógeno danificado que seja causador de uma patologia, o que permitiria o restabelecimento da actividade da proteína perdida e eventualmente a recuperação do estado fisiológico normal, não patológico. Este é o objectivo da terapia genética, um dos campos em que se está a trabalhar activamente em medicina, analisando vantagens e inconvenientes de diferentes sistemas de administração do gene (virais e não virais) e os mecanismos de selecção do ponto de integração dos elementos genéticos (distintos para os vírus e transposões) no genoma alvo.[130] Neste caso, antes de apresentar-se a possibilidade de realizar uma terapia génica numa determinada patologia, é fundamental compreender o impacto do gene de interesse no desenvolvimento de dita patologia, para o qual é necessário o desenvolvimento de um modelo animal, eliminando ou modificando dito gene num animal de laboratório, mediante a técnica nocaute.[131] Só no caso de os resultados no modelo animal serem satisfatórios poderá ser analisada a possibilidade de restabelecer o gene danificado mediante terapia génica;
- utilizada para enriquecer um alimento: por exemplo, a composição do leite (que é uma importante fonte de proteínas para o consumo humano e animal) pode modificar-se mediante transgénese, adicionando genes exógenos e inactivando genes endógenos para melhorar o seu valor nutricional, reduzir infecções nas glândulas mamárias, proporcionar aos consumidores proteínas antipatogénicas e preparar proteínas recombinantes para o uso farmacêutico;[132][133]
- útil para melhorar a resistência do organismo transformado: por exemplo, em plantas podem-se introduzir genes que conferem resistência a agentes patogénicos (vírus, insectos, fungos), assim como a agentes estressantes abióticos (salinidade, seca, metais pesados).[134][135][136]
Medicina Forense
A Medicina Forense pode utilizar o ADN presente no sangue, no sémen, na pele, na saliva ou em pelos existentes na cena de um crime para identificar o responsável. Esta técnica denomina-se impressão genética ou perfil de ADN. Ao realizar a impressão genética, compara-se o comprimento de secções altamente variáveis do ADN repetitivo, como os microssatélites, entre pessoas diferentes. Este método é muito fiável para identificar um criminoso.[137] No entanto, a identificação pode complicar-se se a cena do crime estiver contaminada com ADN de pessoas diferentes.[138] A técnica da impressão genética foi desenvolvida em 1984 pelo geneticista britânico Sir Alec Jeffreys,[139] e utilizada pela primeira vez para condenar Colin Pitchfork por causa dos assassinatos de Narborough (Reino Unido) em 1983 e 1986.[140] Pode-se requerer às pessoas acusadas de certos tipos de crimes que cedam uma amostra de ADN para ser introduzida numa base de dados. Isto tem facilitado o trabalho dos investigadores na resolução de casos antigos, onde só se obteve uma amostra de ADN da cena do crime, em alguns casos permitindo exonerar um convicto. A impressão genética também pode ser utilizado para identificar vítimas de acidentes em massa,[141] ou para realizar provas de consanguinidade.[142]
Bioinformática
A Bioinformática implica a manipulação, busca e extracção de informação dos dados da sequência do ADN. O desenvolvimento das técnicas para armazenar e procurar sequências de ADN gerou avanços no desenvolvimento de software para computadores, com muitas aplicações, especialmente algoritmos de busca de frases, aprendizagem automática e teorias de bases de dados.[143] A busca de frases ou algoritmos de coincidências, que procuram a ocorrência de uma sequência de letras dentro de uma sequência de letras maior, desenvolveu-se para buscar sequências específicas de nucleótidos.[144] Em outras aplicações como editores de textos, inclusive algoritmos simples podem funcionar, mas as sequências de ADN podem gerar que estes algoritmos apresentem um comportamento de quase o pior caso, devido ao baixo número de carácteres. O problema relacionado do alinhamento de sequências procura identificar sequências homólogas e localizar mutações específicas que as diferenciam. Estas técnicas, fundamentalmente o alinhamento múltiplo de sequências, utilizam-se ao estudar as relações filogenéticas e a função das proteínas.[145] As colecções de dados que representam sequências do ADN do tamanho de um genoma, tais como as produzidas pelo Projecto Genoma Humano, são difíceis de utilizar sem notações que marcam a localização dos genes e dos elementos reguladores em cada cromossoma. As regiões de ADN que têm padrões associados com genes codificantes de proteínas ou ARN podem identificar-se por algoritmos de localização de genes, o que permite aos investigadores predizer a presença de produtos génicos específicos num organismo mesmo antes que se tenha isolado experimentalmente.[146]
Nanotecnologia de ADN
A nanotecnologia de ADN utiliza as propriedades únicas de reconhecimento molecular de ADN e outros ácidos nucleicos para criar complexos ramificados auto-ensamblados com propriedades úteis. Neste caso, o ADN utiliza-se como um material estrutural, mais que como um portador de informação biológica.[147] Isto conduziu à criação de lâminas periódicas de duas dimensões (ambas baseadas em azulejos, assim como usando o método de "ADN origami"), para além de estruturas em três dimensões em forma de poliedros.[148]
História e antropologia
O ADN armazena mutações conservadas com o tempo e portanto contém informação histórica. Comparando sequências de ADN, os geneticistas podem inferir a história evolutiva dos organismos, a sua filogenia.[149] O campo da filogenia é uma ferramenta potente na biologia evolutiva. Se se compararem as sequências de ADN dentro de uma espécie, os geneticistas de populações podem conhecer a história de populações particulares. Isto pode-se utilizar numa ampla variedade de estudos, desde ecologia até antropologia; por exemplo, evidência baseada na análise de ADN está a ser utilizada para identificar as Dez Tribos Perdidas de Israel.[150][151]
Notas
Ver também
Referências
- ↑ https://www.planalto.gov.br/ccivil_03/_ato2004-2006/2005/lei/l11105.htm?
- ↑ «DNA is held together by hydrophobic forces». Tech Explorist (em inglês). 23 de setembro de 2019. Consultado em 23 de setembro de 2019. Cópia arquivada em 23 de setembro de 2019
- ↑ a b c d e f Bruce Alberts,Alexander Johnson, Julian Lewis, Kazuo, Martin Raff, Keith Roberts, and Peter Walters (2002). Molecular Biology of the Cell; Fourth Edition. Nova Iorque e Londres: Garland Science. ISBN 0-8153-3218-1. Consultado em 25 de junho de 2007. Cópia arquivada em 3 de outubro de 2009
- ↑ Butler, John M. (2001) Forensic DNA Typing "Elsevier". pp. 14–15. ISBN 978-0-12-147951-0.
- ↑ Mandelkern M, Elias J, Eden D, Crothers D (1981). «The dimensions of DNA in solution». J Mol Biol. 152 (1): 153–61. PMID 7338906
- ↑ Gregory S; et al. (2006). «The DNA sequence and biological annotation of human chromosome 1». Nature. 441 (7091): 315–21. PMID 16710414
- ↑ Watson J, Crick F (1953). «Molecular structure of nucleic acids; a structure for deoxyribose nucleic acid» (PDF). Nature. 171 (4356): 737–8. PMID 13054692. Consultado em 25 de junho de 2007. Cópia arquivada (PDF) em 23 de agosto de 2014
- ↑ Berg J., Tymoczko J. and Stryer L. (2002) Biochemistry. W. H. Freeman and Company ISBN 0-7167-4955-6
- ↑ «Abbreviations and Symbols for Nucleic Acids, Polynucleotides and their Constituents IUPAC-IUB» (em inglês). Commission on Biochemical Nomenclature (CBN). Consultado em 3 de janeiro de 2006. Cópia arquivada em 5 de fevereiro de 2007
- ↑ G. Vieira, H. de Lencastre , L. Archer (1989). «Restriction analysis of PBS 1-related phages». Springer-Verlag. Archives of Virology. 106. ISSN 0304-8608. doi:10.1007/BF01311043
- ↑ Ponnuswamy P, Gromiha M (1994). «On the conformational stability of oligonucleotide duplexes and tRNA molecules». J Theor Biol. 169 (4): 419–32. PMID 7526075
- ↑ Clausen-Schaumann H, Rief M, Tolksdorf C, Gaub H (2000). «Mechanical stability of single DNA molecules». Biophys J. 78 (4): 1997–2007. PMID 10733978. Consultado em 10 de novembro de 2007. Cópia arquivada (PDF) em 24 de setembro de 2019
- ↑ Chalikian T, Völker J, Plum G, Breslauer K (1999). «A more unified picture for the thermodynamics of nucleic acid duplex melting: a characterization by calorimetric and volumetric techniques». Proc Natl Acad Sci U S A. 96 (14): 7853–8. PMID 10393911. Consultado em 10 de novembro de 2007. Cópia arquivada (PDF) em 24 de setembro de 2019
- ↑ Isaksson J, Acharya S, Barman J, Cheruku P, Chattopadhyaya J (2004). «Single-stranded adenine-rich DNA and RNA retain structural characteristics of their respective double-stranded conformations and show directional differences in stacking pattern». Biochemistry. 43 (51): 15996–6010. PMID 15609994
- ↑ G. Michael Blackburn, Michael J. Gait, David Loakes, David M. Williams (2006). Nucleic acids in chemistry and biology 3 ed. [S.l.]: Royal Society of Chemistry. ISBN 978-0-85404-654-6
- ↑ Wing R, Drew H, Takano T, Broka C, Tanaka S, Itakura K, Dickerson R (1980). «Crystal structure analysis of a complete turn of B-DNA». Nature. 287 (5784): 755–8. PMID 7432492
- ↑ Pabo C, Sauer R (1984). «Protein-DNA recognition». Annu Rev Biochem. 53: 293–321. PMID 6236744
- ↑ Makalowska I, Lin C, Makalowski W (2005). «Overlapping genes in vertebrate genomes». Comput Biol Chem. 29 (1): 1–12. PMID 15680581
- ↑ Johnson Z, Chisholm S (2004). «Properties of overlapping genes are conserved across microbial genomes». Genome Res. 14 (11): 2268–72. PMID 15520290
- ↑ Lamb R, Horvath C (1991). «Diversity of coding strategies in influenza viruses». Trends Genet. 7 (8): 261–6. PMID 1771674
- ↑ Benham C, Mielke S (2005). «DNA mechanics». Annu Rev Biomed Eng. 7: 21–53. PMID 16004565
- ↑ a b Champoux J (2001). «DNA topoisomerases: structure, function, and mechanism». Annu Rev Biochem. 70: 369–413. PMID 11395412
- ↑ a b Wang J (2002). «Cellular roles of DNA topoisomerases: a molecular perspective». Nat Rev Mol Cell Biol. 3 (6): 430–40. PMID 12042765
- ↑ a b Hayashi G, Hagihara M, Nakatani K (2005). «Application of L-DNA as a molecular tag». Nucleic Acids Symp Ser (Oxf). 49: 261–262. PMID 17150733
- ↑ Vargason JM, Eichman BF, Ho PS (2000). «The extended and eccentric E-DNA structure induced by cytosine methylation or bromination». Nature Structural Biology. 7: 758–761. PMID 10966645
- ↑ Wang G, Vasquez KM (2006). «Non-B DNA structure-induced genetic instability». Mutat Res. 598 (1–2): 103–119. PMID 16516932
- ↑ Allemand; et al. (1998). «Stretched and overwound DNA forms a Pauling-like structure with exposed bases». PNAS. 24: 14152-14157. PMID 9826669
- ↑ Palecek E (1991). «Local supercoil-stabilized DNA structures». Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology. 26 (2): 151–226. PMID 1914495
- ↑ Basu H, Feuerstein B, Zarling D, Shafer R, Marton L (1988). «Recognition of Z-RNA and Z-DNA determinants by polyamines in solution: experimental and theoretical studies». J Biomol Struct Dyn. 6 (2): 299–309. PMID 2482766
- ↑ Leslie AG, Arnott S, Chandrasekaran R, Ratliff RL (1980). «Polymorphism of DNA double helices». J. Mol. Biol. 143 (1): 49–72. PMID 7441761
- ↑ Wahl M, Sundaralingam M (1997). «Crystal structures of A-DNA duplexes». Biopolymers. 44 (1): 45–63. PMID 9097733
- ↑ Lu XJ, Shakked Z, Olson WK (2000). «A-form conformational motifs in ligand-bound DNA structures». J. Mol. Biol. 300 (4): 819-40. PMID 10891271
- ↑ Rothenburg S, Koch-Nolte F, Haag F. «DNA methylation and Z-DNA formation as mediators of quantitative differences in the expression of alleles». Immunol Rev. 184: 286–98. PMID 12086319
- ↑ Oh D, Kim Y, Rich A (2002). «Z-DNA-binding proteins can act as potent effectors of gene expression in vivo». Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99 (26): 16666-71. PMID 12486233
- ↑ «NDB UD0017». Ndbserver.rutgers.edu. Consultado em 25 de junho de 2008. Arquivado do original em 7 de junho de 2013
- ↑ a b Greider C, Blackburn E (1985). «Identification of a specific telomere terminal transferase activity in Tetrahymena extracts». Cell. 43 (2 Pt 1): 405–13. PMID 3907856
- ↑ a b c Nugent C, Lundblad V (1998). «The telomerase reverse transcriptase: components and regulation». Genes Dev. 12 (8): 1073–85. PMID 9553037. Consultado em 24 de junho de 2008. Cópia arquivada em 27 de setembro de 2007
- ↑ Wright W, Tesmer V, Huffman K, Levene S, Shay J (1997). «Normal human chromosomes have long G-rich telomeric overhangs at one end». Genes Dev. 11 (21): 2801–9. PMID 9353250. Consultado em 24 de junho de 2008. Cópia arquivada em 27 de setembro de 2007
- ↑ a b Burge S, Parkinson G, Hazel P, Todd A, Neidle S (2006). «Quadruplex DNA: sequence, topology and structure». Nucleic Acids Res. 34 (19): 5402–15. PMID 17012276. doi:10.1093/nar/gkl655. Consultado em 24 de junho de 2008. Cópia arquivada em 24 de setembro de 2019
- ↑ Parkinson G, Lee M, Neidle S (2002). «Crystal structure of parallel quadruplexes from human telomeric DNA». Nature. 417 (6891): 876–80. PMID 12050675. doi:10.1038/nature755
- ↑ Huppert, Julian Leon (15 de dezembro de 2007). «Four-stranded DNA: cancer, gene regulation and drug development». Philosophical Transactions of the Royal Society A: Mathematical, Physical and Engineering Sciences. 365 (1861): 2969 -2984. doi:10.1098/rsta.2007.0011. Consultado em 8 de outubro de 2010. Cópia arquivada em 8 de dezembro de 2015
- ↑ Griffith J, Comeau L, Rosenfield S, Stansel R, Bianchi A, Moss H, de Lange T (1999). «Mammalian telomeres end in a large duplex loop». Cell. 97 (4): 503–14. PMID 10338214
- ↑ Klose R, Bird A (2006). «Genomic DNA methylation: the mark and its mediators». Trends Biochem Sci. 31 (2): 89–97. PMID 16403636. doi:10.1016/j.tibs.2005.12.008
- ↑ Bird A (2002). «DNA methylation patterns and epigenetic memory». Genes Dev. 16 (1): 6–21. PMID 11782440. doi:10.1101/gad.947102
- ↑ Walsh C, Xu G (2006). «Cytosine methylation and DNA repair». Curr Top Microbiol Immunol. 301: 283–315. PMID 16570853. doi:10.1007/3-540-31390-7_11
- ↑ Ratel D, Ravanat J, Berger F, Wion D (2006). «N6-methyladenine: the other methylated base of DNA». Bioessays. 28 (3): 309–15. PMID 16479578. doi:10.1002/bies.20342
- ↑ Gommers-Ampt J, Van Leeuwen F, de Beer A, Vliegenthart J, Dizdaroglu M, Kowalak J, Crain P, Borst P (1993). «beta-D-glucosyl-hydroxymethyluracil: a novel modified base present in the DNA of the parasitic protozoan T. brucei». Cell. 75 (6): 1129–36. PMID 8261512. doi:10.1016/0092-8674(93)90322-H
- ↑ «PDB 1JDG». Rcsb.org. Consultado em 16 de julho de 2008. Cópia arquivada em 22 de setembro de 2008
- ↑ Douki T, Reynaud-Angelin A, Cadet J, Sage E (2003). «Bipyrimidine photoproducts rather than oxidative lesions are the main type of DNA damage involved in the genotoxic effect of solar UVA radiation». Biochemistry. 42 (30): 9221–6. PMID 12885257. doi:10.1021/bi034593c
- ↑ Cadet J, Delatour T, Douki T, Gasparutto D, Pouget J, Ravanat J, Sauvaigo S (1999). «Hydroxyl radicals and DNA base damage». Mutat Res. 424 (1–2): 9–21. PMID 10064846
- ↑ Shigenaga M, Gimeno C, Ames B (1989). «Urinary 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine as a biological marker of in vivo oxidative DNA damage». Proc Natl Acad Sci U S A. 86 (24): 9697–701. PMID 2602371. doi:10.1073/pnas.86.24.9697. Consultado em 16 de julho de 2008. Cópia arquivada em 7 de março de 2008
- ↑ Cathcart R, Schwiers E, Saul R, Ames B (1984). «Thymine glycol and thymidine glycol in human and rat urine: a possible assay for oxidative DNA damage» (PDF). Proc Natl Acad Sci U S A. 81 (18): 5633–7. PMID 6592579. doi:10.1073/pnas.81.18.5633. Consultado em 16 de julho de 2008. Cópia arquivada (PDF) em 25 de junho de 2008
- ↑ Valerie K, Povirk L (2003). «Regulation and mechanisms of mammalian double-strand break repair». Oncogene. 22 (37): 5792–812. PMID 12947387. doi:10.1038/sj.onc.1206679
- ↑ Ferguson L, Denny W (1991). «The genetic toxicology of acridines». Mutat Res. 258 (2): 123–60. PMID 1881402
- ↑ Jeffrey A (1985). «DNA modification by chemical carcinogens». Pharmacol Ther. 28 (2): 237–72. PMID 3936066. doi:10.1016/0163-7258(85)90013-0
- ↑ Stephens T, Bunde C, Fillmore B (2000). «Mechanism of action in thalidomide teratogenesis». Biochem Pharmacol. 59 (12): 1489–99. PMID 10799645. doi:10.1016/S0006-2952(99)00388-3
- ↑ Braña M, Cacho M, Gradillas A, de Pascual-Teresa B, Ramos A (2001). «Intercalators as anticancer drugs». Curr Pharm Des. 7 (17): 1745–80. PMID 11562309. doi:10.2174/1381612013397113
- ↑ Venter J; et al. (2001). «The sequence of the human genome». Science. 291 (5507): 1304–51. PMID 11181995. doi:10.1126/science.1058040
- ↑ Criada a partir de. «PDB 1MSW». Rcsb.org. Consultado em 4 de setembro de 2008. Cópia arquivada em 6 de janeiro de 2008
- ↑ Thanbichler M, Wang S, Shapiro L (2005). «The bacterial nucleoid: a highly organized and dynamic structure». J Cell Biochem. 96 (3): 506–21. PMID 15988757. doi:10.1002/jcb.20519
- ↑ Wolfsberg T, McEntyre J, Schuler G (2001). «Guide to the draft human genome». Nature. 409 (6822): 824–6. PMID 11236998. doi:10.1038/35057000
- ↑ Gregory T (2005). «The C-value enigma in plants and animals: a review of parallels and an appeal for partnership». Ann Bot (Lond). 95 (1): 133–46. PMID 15596463. doi:10.1093/aob/mci009. Consultado em 10 de novembro de 2007. Cópia arquivada em 16 de maio de 2007
- ↑ The ENCODE Project Consortium (2007). «Identification and analysis of functional elements in 1% of the human genome by the ENCODE pilot project». Nature. 447 (7146): 799–816. doi:10.1038/nature05874
- ↑ Pidoux A, Allshire R (2005). «The role of heterochromatin in centromere function». Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 360 (1455): 569–79. PMID 15905142. doi:10.1098/rstb.2004.1611
- ↑ Harrison P, Hegyi H, Balasubramanian S, Luscombe N, Bertone P, Echols N, Johnson T, Gerstein M (2002). «Molecular fossils in the human genome: identification and analysis of the pseudogenes in chromosomes 21 and 22». Genome Res. 12 (2): 272–80. PMID 11827946. doi:10.1101/gr.207102. Consultado em 10 de novembro de 2007. Cópia arquivada em 28 de outubro de 2007
- ↑ Harrison P, Gerstein M (2002). «Studying genomes through the aeons: protein families, pseudogenes and proteome evolution». J Mol Biol. 318 (5): 1155–74. PMID 12083509. doi:10.1016/S0022-2836(02)00109-2
- ↑ «Genetic Code». Brooklyn.cuny.edu. Consultado em 7 de outubro de 2010. Cópia arquivada em 9 de novembro de 2010
- ↑ «Transcribe and Translate a Gene». Learn.genetics.utah.edu. Consultado em 7 de outubro de 2010. Arquivado do original em 1 de setembro de 2010
- ↑ Albà M (2001). «Replicative DNA polymerases». Genome Biol. 2 (1): REVIEWS3002. PMID 11178285. doi:10.1186/gb-2001-2-1-reviews3002
- ↑ Sandman K, Pereira S, Reeve J (1998). «Diversity of prokaryotic chromosomal proteins and the origin of the nucleosome». Cell Mol Life Sci. 54 (12): 1350–64. PMID 9893710. doi:10.1007/s000180050259
- ↑ Dame RT (2005). «The role of nucleoid-associated proteins in the organization and compaction of bacterial chromatin». Mol. Microbiol. 56 (4): 858–70. PMID 15853876. doi:10.1111/j.1365-2958.2005.04598.x
- ↑ Luger K, Mäder A, Richmond R, Sargent D, Richmond T (1997). «Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 A resolution». Nature. 389 (6648): 251–60. PMID 9305837. doi:10.1038/38444
- ↑ Jenuwein T, Allis C (2001). «Translating the histone code». Science. 293 (5532): 1074–80. PMID 11498575. doi:10.1126/science.1063127
- ↑ Ito T. «Nucleosome assembly and remodelling». Curr Top Microbiol Immunol. 274: 1–22. PMID 12596902
- ↑ Thomas J (2001). «HMG1 and 2: architectural DNA-binding proteins». Biochem Soc Trans. 29 (Pt 4): 395–401. PMID 11497996. doi:10.1042/BST0290395
- ↑ Grosschedl R, Giese K, Pagel J (1994). «HMG domain proteins: architectural elements in the assembly of nucleoprotein structures». Trends Genet. 10 (3): 94–100. PMID 8178371. doi:10.1016/0168-9525(94)90232-1
- ↑ Iftode C, Daniely Y, Borowiec J (1999). «Replication protein A (RPA): the eukaryotic SSB». Crit Rev Biochem Mol Biol. 34 (3): 141–80. PMID 10473346. doi:10.1080/10409239991209255
- ↑ Criado a partir de. «PDB 1LMB». Rcsb.org. Consultado em 30 de setembro de 2008. Cópia arquivada em 6 de janeiro de 2008
- ↑ Myers L, Kornberg R (2000). «Mediator of transcriptional regulation». Annu Rev Biochem. 69: 729–49. PMID 10966474. doi:10.1146/annurev.biochem.69.1.729
- ↑ Spiegelman B, Heinrich R (2004). «Biological control through regulated transcriptional coactivators». Cell. 119 (2): 157–67. PMID 15479634. doi:10.1016/j.cell.2004.09.037
- ↑ Li Z, Van Calcar S, Qu C, Cavenee W, Zhang M, Ren B (2003). «A global transcriptional regulatory role for c-Myc in Burkitt's lymphoma cells». Proc Natl Acad Sci USA. 100 (14): 8164–9. PMID 12808131. doi:10.1073/pnas.1332764100. Consultado em 30 de setembro de 2008. Cópia arquivada em 24 de setembro de 2019
- ↑ Pabo C, Sauer R (1984). «Protein-DNA recognition». Annu Rev Biochem. 53: 293–321. PMID 6236744. doi:10.1146/annurev.bi.53.070184.001453
- ↑ Criado a partir de. «PDB 1RVA». Rcsb.org. Consultado em 30 de setembro de 2008. Cópia arquivada em 6 de janeiro de 2008
- ↑ Bickle T, Krüger D (1993). «Biology of DNA restriction». Microbiol Rev. 57 (2): 434–50. PMID 8336674
- ↑ a b Doherty A, Suh S (2000). «Structural and mechanistic conservation in DNA ligases.». Nucleic Acids Res. 28 (21): 4051–8. PMID 11058099. doi:10.1093/nar/28.21.4051. Consultado em 30 de setembro de 2008. Cópia arquivada em 24 de setembro de 2019
- ↑ Schoeffler A, Berger J (2005). «Recent advances in understanding structure-function relationships in the type II topoisomerase mechanism». Biochem Soc Trans. 33 (Pt 6): 1465–70. PMID 16246147. doi:10.1042/BST20051465
- ↑ Tuteja N, Tuteja R (2004). «Unraveling DNA helicases. Motif, structure, mechanism and function». Eur J Biochem. 271 (10): 1849–63. PMID 15128295. doi:10.1111/j.1432-1033.2004.04094.x
- ↑ Joyce C, Steitz T (1995). «Polymerase structures and function: variations on a theme?». J Bacteriol. 177 (22): 6321–9. PMID 7592405. Consultado em 30 de setembro de 2008. Cópia arquivada (PDF) em 24 de setembro de 2019
- ↑ Hubscher U, Maga G, Spadari S (2002). «Eukaryotic DNA polymerases». Annu Rev Biochem. 71: 133–63. PMID 12045093. doi:10.1146/annurev.biochem.71.090501.150041
- ↑ Johnson A, O'Donnell M (2005). «Cellular DNA replicases: components and dynamics at the replication fork». Annu Rev Biochem. 74: 283–315. PMID 15952889. doi:10.1146/annurev.biochem.73.011303.073859
- ↑ Tarrago-Litvak L, Andréola M, Nevinsky G, Sarih-Cottin L, Litvak S (1994). «The reverse transcriptase of HIV-1: from enzymology to therapeutic intervention». FASEB J. 8 (8): 497–503. PMID 7514143. Consultado em 30 de setembro de 2008. Cópia arquivada em 5 de setembro de 2008
- ↑ Martinez E (2002). «Multi-protein complexes in eukaryotic gene transcription». Plant Mol Biol. 50 (6): 925–47. PMID 12516863. doi:10.1023/A:1021258713850
- ↑ Criado a partir de. «PDB 1M6G». Rcsb.org. Consultado em 17 de outubro de 2008. Cópia arquivada em 10 de janeiro de 2010
- ↑ Cremer T, Cremer C (2001). «Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells». Nat Rev Genet. 2 (4): 292–301. PMID 11283701. doi:10.1038/35066075
- ↑ «Chromosomal crossover» (em inglês). Sciencedaily.com. Consultado em 7 de outubro de 2010. Arquivado do original em 21 de maio de 2011
- ↑ Pál C, Papp B, Lercher M (2006). «An integrated view of protein evolution». Nat Rev Genet. 7 (5): 337–48. PMID 16619049. doi:10.1038/nrg1838
- ↑ O'Driscoll M, Jeggo P (2006). «The role of double-strand break repair - insights from human genetics». Nat Rev Genet. 7 (1): 45–54. PMID 16369571. doi:10.1038/nrg1746
- ↑ Vispé S, Defais M (1997). «Mammalian Rad51 protein: a RecA homologue with pleiotropic functions». Biochimie. 79 (9-10): 587–92. PMID 9466696. doi:10.1016/S0300-9084(97)82007-X
- ↑ Neale MJ, Keeney S (2006). «Clarifying the mechanics of DNA strand exchange in meiotic recombination». Nature. 442 (7099): 153–8. PMID 16838012. doi:10.1038/nature04885
- ↑ Dickman M, Inglêston S, Sedelnikova S, Rafferty J, Lloyd R, Grasby J, Hornby D (2002). «The RuvABC resolvasome». Eur J Biochem. 269 (22): 5492–501. PMID 12423347. doi:10.1046/j.1432-1033.2002.03250.x
- ↑ Joyce G (2002). «The antiquity of RNA-based evolution». Nature. 418 (6894): 214–21. PMID 12110897. doi:10.1038/418214a
- ↑ Orgel L. «Prebiotic chemistry and the origin of the RNA world» (PDF). Crit Rev Biochem Mol Biol. 39 (2): 99–123. PMID 15217990. doi:10.1080/10409230490460765. Consultado em 10 de agosto de 2010. Cópia arquivada (PDF) em 13 de novembro de 2018
- ↑ Davenport R (2001). «Ribozymes. Making copies in the RNA world». Science. 292 (5520). 1278 páginas. PMID 11360970. doi:10.1126/science.292.5520.1278a
- ↑ Szathmáry E (1992). «What is the optimum size for the genetic alphabet?» (PDF). Proc Natl Acad Sci U S A. 89 (7): 2614–8. PMID 1372984. doi:10.1073/pnas.89.7.2614. Consultado em 17 de outubro de 2008. Cópia arquivada (PDF) em 25 de junho de 2008
- ↑ Lindahl T (1993). «Instability and decay of the primary structure of DNA». Nature. 362 (6422): 709–15. PMID 8469282. doi:10.1038/362709a0
- ↑ Vreeland R, Rosenzweig W, Powers D (2000). «Isolation of a 250 million-year-old halotolerant bacterium from a primary salt crystal». Nature. 407 (6806): 897–900. PMID 11057666. doi:10.1038/35038060
- ↑ Hebsgaard M, Phillips M, Willerslev E (2005). «Geologically ancient DNA: fact or artefact?». Trends Microbiol. 13 (5): 212–20. PMID 15866038. doi:10.1016/j.tim.2005.03.010
- ↑ Nickle D, Learn G, Rain M, Mullins J, Mittler J (2002). «Curiously modern DNA for a "250 million-year-old" bacterium». J Mol Evol. 54 (1): 134–7. PMID 11734907. doi:10.1007/s00239-001-0025-x
- ↑ Birnbaum D, Coulier F, Pébusque MJ, Pontarotti P. (2000). «"Paleogenomics": looking in the past to the future». J Exp Zool. 288 ((1): 21-2). PMID 10750049
- ↑ Blanchette M, Green ED, Miller W, Haussler D. (2004). «Reconstructing large regions of an ancestral mammalian genome in silico». Genome Res. 14 ((12): 2412-23). PMID 15574820. doi:10.1101/gr.2800104
- ↑ Gaucher EA, Thomson JM, Burgan MF, Benner SA. (2003). «Inferring the palaeoenvironment of ancient bacteria on the basis of resurrected proteins». Nature. 425 ((6955): 285-8). PMID 13679914. doi:10.1038/nature01977
- ↑ Thornton JW. (2004). «Resurrecting ancient genes: experimental analysis of extinct molecules». Nat Rev Genet. 5 ((5): 366-75). PMID 15143319. doi:10.1038/nrg1324
- ↑ Benner SA, Caraco MD, Thomson JM, Gaucher EA. (2002). «Planetary biology--paleontological, geological, and molecular histories of life». Science. 296 ((5569): 864-8). PMID 11988562. doi:10.1126/science.1069863
- ↑ a b c d Dahm R (Janeiro de 2008). «Discovering DNA: Friedrich Miescher and the early years of nucleic acid research» (PDF). Human Genetics. 122 (6): 565–581. PMID 17901982. doi:10.1007/s00439-007-0433-0. Consultado em 25 de agosto de 2010. Arquivado do original (PDF) em 19 de janeiro de 2012
- ↑ Morange, Michel. A History of Molecular Biology. Cambridge, MA: Harvard University Press. 1998.
- ↑ a b Gerald Karp (2005). Biologia celular e molecular. conceitos e experimentos. [S.l.]: Editora Manole. 9788520415931
- ↑ Mary Ellen Jones (29 de setembro de 1953). «Albrecht Kossel, A Biographical Sketch» (PDF). The Yale Journal of Biology and Medicine. 26. PMID 13103145. Consultado em 23 de agosto de 2010. Cópia arquivada (PDF) em 9 de fevereiro de 2019
- ↑ Graeme K. Hunter (2000). Vital forces. the discovery of the molecular basis of life. [S.l.]: Academic Press. 9780123618115
- ↑ «The Nobel Prize in Physiology or Medicine 1910». Site oficial da Fundação Nobel (em inglês). Nobelprize.org. Consultado em 23 de agosto de 2010. Cópia arquivada em 12 de outubro de 2010
- ↑ Levene P (1 de dezembro de 1919). «The structure of yeast nucleic acid». J Biol Chem. 40 (2): 415–24. Consultado em 9 de outubro de 2010. Cópia arquivada em 29 de junho de 2009
- ↑ Levene, P; London, E.S. (6 de fevereiro de 1929). «GUANINEDESOXYPENTOSIDE FROM THYMUS NUCLEIC ACID» (PDF). J Biol Chem. 81 (3): 711–13. Consultado em 9 de outubro de 2010. Cópia arquivada (PDF) em 11 de junho de 2019
- ↑ Levene, P; London, E.S. (17 de junho de 1929). «THE STRUCTURE OF THYMONUCLEIC ACID» (PDF). J Biol Chem. 83 (3): 793-802. Consultado em 9 de outubro de 2010. Cópia arquivada (PDF) em 11 de junho de 2019
- ↑ Clare O'Connor (2008). «Isolating Hereditary Material: Frederick Griffith, Oswald Avery, Alfred Hershey, and Martha Chase» (em inglês). Nature. Consultado em 25 de agosto de 2010. Cópia arquivada em 8 de agosto de 2010
- ↑ Lehrer, Steven (2006). Explorers of the Body 2ª ed. [S.l.: s.n.] pp. 47–52. Consultado em 20 de maio de 2009. Cópia arquivada em 14 de novembro de 2013
- ↑ Avery, O T; Macleod C M, McCarty M (outubro 2000). "Studies on the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types: Induction of transformation by a desoxyribonucleic acid fraction isolated from Pneumococcus type III. Oswald Theodore Avery (1877-1955)". Clin. Orthop. Relat. Res. 379 (379 Suppl): S3–8. doi:10.1097/00003086-200010001-00002. PMID 11039746.
- ↑ a b A. D. Hershey and Martha Chase (20 de setembro de 1952). «INDEPENDENT FUNCTIONS OF VIRAL PROTEIN AND NUCLEIC ACID IN GROWTH OF BACTERIOPHAGE» (PDF). Rockefeller University Press. The Journal of Cell Biology (em inglês). 36 (1): 39-56. Consultado em 12 de agosto de 2010. Cópia arquivada (PDF) em 15 de julho de 2010
- ↑ Miller WL. (1979). «Use of recombinant DNA technology for the production of polypeptides». Adv Exp Med Biol. 118: 153-74. Consultado em 17 de outubro de 2008. Cópia arquivada em 13 de fevereiro de 2009
- ↑ Leader B, Baca QJ, Golan DE. (2008). «Protein therapeutics: a summary and pharmacological classification». Nat Rev Drug Discov. 7 (1): 21-39. Consultado em 17 de outubro de 2008. Cópia arquivada em 6 de janeiro de 2009
- ↑ Dingermann T. (2008). «Recombinant therapeutic proteins: production platforms and challenges». Biotechnol J. 3 (1): 90-7 [ligação inativa]
- ↑ Voigt K, Izsvák Z, Ivics Z. (2008). «Targeted gene insertion for molecular medicine». J Mol Med. Jul 8. Consultado em 17 de outubro de 2008. Arquivado do original em 24 de setembro de 2019
- ↑ Houdebine L (2007). «Transgenic animal models in biomedical research». Methods Mol Biol. 360: 163–202. PMID 17172731 [https://web.archive.org/web/20190114135326/http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17172731?ordinalpos=6&itool=EntrezSystem2.PEntrez.Pubmed.Pubmed_ResultsPanel.Pubmed_RVDocSum%7D%7D Arquivado em 14 de janeiro de 2019, no Wayback Machine.
- ↑ Soler E, Thépot D, Rival-Gervier S, Jolivet G, Houdebine LM. (2006). «Preparation of recombinant proteins in milk to improve human and animal health». Reprod Nutr Dev. 46 ((5) 579-88) [1] Arquivado em 3 de julho de 2009, no Wayback Machine.
- ↑ Chávez A, Muñoz de Chávez M. (2003). «Nutrigenomics in public health nutrition: short-term perspectives». Eur J Clin Nutr. 57 (Suppl 1 S97-100) [2] Arquivado em 6 de janeiro de 2009, no Wayback Machine.
- ↑ Vasil IK. (2007). «Molecular genetic improvement of cereals: transgenic wheat (Triticum aestivum L.)». Plant Cell Rep. 26 (8): 1133-54. Consultado em 17 de outubro de 2008. Arquivado do original em 24 de setembro de 2019
- ↑ Daniell H, Dhingra A (2002). «Multigene engineering: dawn of an exciting new era in biotechnology». Curr Opin Biotechnol. 13 (2): 136–41. PMID 11950565. doi:10.1016/S0958-1669(02)00297-5
- ↑ Job D (2002). «Plant biotechnology in agriculture». Biochimie. 84 (11): 1105–10. PMID 12595138. doi:10.1016/S0300-9084(02)00013-5
- ↑ Collins A, Morton N (1994). «Likelihood ratios for DNA identification» (PDF). Proc Natl Acad Sci USA. 91 (13): 6007–11. PMID 8016106. doi:10.1073/pnas.91.13.6007. Consultado em 18 de outubro de 2008. Cópia arquivada (PDF) em 27 de novembro de 2007
- ↑ Weir B, Triggs C, Starling L, Stowell L, Walsh K, Buckleton J (1997). «Interpreting DNA mixtures». J Forensic Sci. 42 (2): 213–22. PMID 9068179
- ↑ Jeffreys A, Wilson V, Thein S (1985). «Individual-specific 'fingerprints' of human DNA». Nature. 316 (6023): 76–9. PMID 2989708. doi:10.1038/316076a0
- ↑ «Colin Pitchfork — first murder conviction on DNA evidence also clears the prime suspect Forensic Science Service» (em inglês). Forensic.gov.uk. Consultado em 23 de dezembro de 2006. Arquivado do original em 10 de janeiro de 2012
- ↑ «DNA Identification in Mass Fatality Incidents». National Institute of Justice. Massfatality.dna.gov. Setembro de 2006. Arquivado do original em 12 de novembro de 2006
- ↑ Bhattacharya, Shaoni. (20 de Abril de 2004). «Killer convicted thanks to relative's DNA». Newscientist.com. Consultado em 22 de dezembro de 2006. Cópia arquivada em 12 de fevereiro de 2007
- ↑ Baldi, Pierre. Brunak, Soren (2001). Bioinformatics: The Machine Learning Approach. [S.l.]: MIT Press. ISBN 978-0-262-02506-5
- ↑ Gusfield, Dan. Algorithms on Strings, Trees, and Sequences: Computer Science and Computational Biology. Cambridge University Press, 15 de janeiro de 1997. ISBN 978-0-521-58519-4.
- ↑ Sjölander K (2004). «Phylogenomic inference of protein molecular function: advances and challenges». Bioinformatics. 20 (2): 170–9. PMID 14734307. doi:10.1093/bioinformatics/bth021. Consultado em 18 de outubro de 2008. Cópia arquivada em 11 de outubro de 2008
- ↑ Mount, DM (2004). Bioinformatics: Sequence and Genome Analysis 2 ed. Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory Press. ISBN 0879697121
- ↑ Yin P, Hariadi RF, Sahu S, Choi HMT, Park SH, LaBean T, Reif JH. (2008). «Programming DNA Tube Circumferences». Science. 321 (5890): 824 - 826
- ↑ Andersen ES, Dong M, Nielsen MM (maio de 2009). «Self-assembly of a nanoscale DNA box with a controllable lid». Nature. 459 (7243): 73–6. PMID 19424153. doi:10.1038/nature07971
- ↑ Wray G (2002). «Dating branches on the tree of life using DNA». Genome Biol. 3 (1): REVIEWS0001. PMID 11806830. doi:10.1046/j.1525-142X.1999.99010.x. Consultado em 18 de outubro de 2008. Cópia arquivada em 24 de setembro de 2019
- ↑ Lost Tribes of Israel, NOVA, data de transmissão na PBS: 22 de Fevereiro de 2000. Transcrição disponível em PBS.org, Arquivado em 16 de setembro de 2008, no Wayback Machine.. Página acedida a 4 de Março de 2006.
- ↑ Kleiman, Yaakov. (13 de Janeiro de 2000). «The Cohanim/DNA Connection: The fascinating story of how DNA studies confirm an ancient biblical tradition». Aish.com. Consultado em 4 de Março de 2006. Cópia arquivada em 25 de abril de 2016
Bibliografia
- Introdução à genética, Riffiths, Wessler, Lewontin, Gesbart, suzuki, Miller, 8º Edição, Guanabara Koogan, 2006.
- Biologia; José Mariano Amabis, Gilberto Rodriges Martho; Moderna; 2004
Ligações externas
- «The Secret Life of DNA - DNA Music compositions» (em inglês)
- «The Register of Francis Crick Personal Papers 1938 - 2007» (em inglês). na Mandeville Special Collections Library, Geisel Library, University of California, San Diego
- «DNA Interactive» (em inglês). Sítio do Dolan DNA Learning Center que inclui dezenas de animações assim como entrevistas com James Watson e outros (requer Adobe Flash)
- «DNA from the Beginning» (em inglês). Sítio da DNA Learning Center sobre DNA, genes e hereditariedade desde Mendel até ao Projecto Genoma Humano
- «Double Helix 1953–2003» (em inglês). National Centre for Biotechnology Education
- «Double helix: 50 years of DNA» (em inglês). , Nature
- «Contribuição de Rosalind Franklin para o estudo do ADN» (em inglês)
- «U.S. National DNA Day» (em inglês). — Veja vídeos e participe em chat em tempo real com cientistas de topo
- «Genetic Education Modules for Teachers» (em inglês). — DNA from the Beginning Study Guide
- «Oiça Francis Crick e James Watson a falar para a BBC en 1962, 1972 e 1974» (em inglês)
- «DNA sob microscópio electrónico» (em inglês)
- «Enrolamento de DNA para formar cromossomas» (em inglês)
- «DISPLAR: Predição de sítios de ligação ao ADN em proteínas» (em inglês)
- «Dolan DNA Learning Center» (em inglês)
- Olby, R. (2003) "Quiet debut for the double helix" Nature 421 (Jan. 23): 402–405. (em inglês)
- «guia básico animado de clonagem de ADN» (em inglês)
- «DNA the Double Helix Game» (em inglês). - Do sítio oficial do Prémio Nobel